Unlocking the Potential of Derivatization Technology in HPLC Analysis

Раскрытие потенциала технологии дериватизации в анализе ВЭЖХ

В современной аналитической химии лабораторные аналитики часто сталкиваются с трудностями, когда некоторые соединения не поддаются обнаружению или разделению традиционными методами. Именно здесь на помощь приходит технология дериватизации — мощный инструмент, предназначенный для повышения чувствительности обнаружения и эффективности разделения.

В данной статье рассматривается применение методов дериватизации в высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) и их роль в преодолении аналитических препятствий.

Что такое дериватизация?

Дериватизация подразумевает модификацию аналитов посредством химических реакций со специфическими реагентами, введение функциональных групп, которые улучшают их обнаруживаемость или разделяемость.

Широко используемый в различных инструментальных методах анализа, включая хроматографию (газовую, жидкостную, сверхкритическую, тонкослойную и капиллярный электрофорез), масс-спектрометрию, ЯМР-спектроскопию, УФ-видимый, флуоресцентный и электрохимический анализ, этот метод стал краеугольным камнем в решении аналитических задач.

Дериватизация в газовой хроматографии против жидкостной хроматографии

В газовой хроматографии (ГХ) дериватизация повышает летучесть образца и чувствительность обнаружения. В ВЭЖХ, напротив, дериватизация обычно использует реагенты (известные как дериватизирующие или маркирующие реагенты), которые реагируют с целевыми соединениями, образуя продукты, которые легче обнаружить или разделить.

Типы дериватизации в ВЭЖХ

Дериватизация методом ВЭЖХ позволяет решить различные проблемы, такие как плохое удерживание, нестабильность и низкая чувствительность, превращая аналиты в легко детектируемые производные. Этот процесс можно классифицировать по природе реакции, месту её проведения и интеграции с аналитическим прибором:

По формированию связей :

  • Маркированные реакции : образуют ковалентные связи между аналитом и дериватизирующим реагентом.
  • Немеченые реакции : включают нековалентные взаимодействия, такие как ионное спаривание, фотолиз, окислительно-восстановительные или электрохимические реакции.

По местоположению реакции :

  • Предколоночная дериватизация : происходит до того, как образец попадает в хроматографическую колонку.
  • Дериватизация в колонке : происходит внутри колонки.
  • Постколоночная дериватизация : происходит после хроматографического разделения.

По интеграции приборов :

  • Онлайн-дериватизация : полностью автоматизирована и интегрирована с прибором.
  • Оффлайн дериватизация : проводится вручную перед аналитическим процессом.
  • Дериватизация t -line : полуавтоматическая, с использованием специализированного оборудования для сложных рабочих процессов дериватизации.
Рабочая станция подготовки образцов HT4000A
Рабочая станция подготовки образцов HT4000A компании HTA SRL — это автоматизированный инструмент для дериватизации, совместимый с широким спектром систем ВЭЖХ.

Распространенные реакции в дериватизации ВЭЖХ

Универсальность метода ВЭЖХ-дериватизации проявляется в разнообразии используемых химических реакций, включая этерификацию, ацилирование, алкилирование, силилирование, боронообразование, циклизацию, ионизацию и фотохимические реакции. Выбор реакции зависит от характеристик аналита и аналитических целей.

Вихревое смешивание с использованием HT4000A
Вихревое смешивание с использованием HT4000A

Предколоночная дериватизация

Предколоночная дериватизация превращает аналит в детектируемое производное перед хроматографическим разделением. Этот метод может быть реализован как в режиме онлайн, так и офлайн.

  • В режиме онлайн аналит и дериватизирующий реагент вводятся через отдельные насосы и смешиваются в режиме реального времени в реакторах.
  • В автономном режиме сначала проводится реакция аналита и реагента, а полученное производное вводится в систему ВЭЖХ.
  • Другой онлайн-метод предполагает включение в подвижную фазу дериватизирующих агентов для непосредственного взаимодействия с аналитом.

Постколоночная дериватизация

Постколоночная дериватизация подразумевает модификацию аналитов после их разделения в колонке ВЭЖХ для повышения их детектируемости. В этом методе разделяемые соединения реагируют с дериватизирующими реагентами до достижения детектора. Этот метод также подразделяется на дериватизацию в УФ-видимом спектре, флуоресцентную, рамановскую, электрохимическую и фотохимическую.

График, поясняющий пост- и предколоночную дериватизацию

Ультрафиолетово-видимая (УФ-ВИС) дериватизация

УФ-дериватизация включает реакцию органических соединений, слабо или совсем не поглощающих УФ-излучение, с дериватизирующими реагентами, содержащими УФ-поглощающие группы, с образованием соединений, обнаруживаемых в УФ-диапазоне. Например, амины могут реагировать с галогенированными углеводородами, карбонильными или ацильными производными с образованием таких обнаруживаемых производных.

Видимая дериватизация служит двум основным целям:

  • Обнаружение ионов переходных металлов : Ионы переходных металлов реагируют с хромогенными реагентами с образованием окрашенных комплексов, хелатов или ионно-ассоциированных соединений, которые затем можно обнаружить с помощью видимого света.
  • Детектирование органических ионов : добавление противоионов аналита к подвижной фазе приводит к образованию окрашенных ионно-парных соединений. Эти соединения можно разделить и детектировать с помощью методов видимого света.

Флуоресцентная дериватизация

Флуоресцентная дериватизация представляет собой реакцию аналита с флуоресцентным дериватизатором с образованием флуоресцентного соединения для детектирования. Некоторые флуоресцентные реагенты сами по себе не обладают флуоресценцией, но образуют производные с высокой интенсивностью флуоресценции.

Хотя дериватизация повышает чувствительность и селективность, она также усложняет систему, увеличивает время и аналитические затраты. Более того, некоторые реакции дериватизации требуют строгого контроля условий реакции. Поэтому её рассматривают только в тех случаях, когда отсутствует удобный и чувствительный метод детектирования или требуется повышение селективности.

Фотохимическая дериватизация

Фотохимическая дериватизация (ФХД) — это метод, основанный на фотохимических реакциях и сочетающийся с другими методами детекции для повышения чувствительности и селективности. Флуоресценция является основным комбинированным методом, часто также используется электрохимический метод.

PCD расширяет сферу применения традиционных методов обнаружения и находит широкое применение при анализе фармацевтических препаратов, сложных биологических образцов и образцов окружающей среды.

Ключевые фотохимические реакции включают внутримолекулярный перенос энергии, столкновительный перенос энергии, тушение, фотоионизацию, изомеризацию, прямые реакции и межмолекулярный распад.

Фотохимический реактор WelView

3 192,00 долл. США 4 560,00 долл. США


Фотохимический реактор Welview

Применение дериватизации ВЭЖХ

1. Обнаружение афлатоксина (фотохимическая дериватизация)

В данном случае фотохимическая дериватизация позволяет обнаруживать афлатоксин в низких концентрациях с помощью флуоресцентных детекторов, достигая более высокой чувствительности по сравнению с традиционными методами.

Схема ПЦР, связанной с ВЭЖХ
Схема фотохимического реактора (ПЦР), подключенного к ВЭЖХ
Хроматограмма афлатоксина

2. Анализ аминокислот в кормах (предколоночная дериватизация)

Колонка: Welch Ultisil Amino Acid (4,6×250 мм, 5 мкм)

Хроматограмма 18 аминокислот

3. Формальдегид в косметике (постколоночная дериватизация)

Применимо к различным косметическим формам, а именно: жидкостям на водной основе, кремам и лосьонам, гелям, жидкостям на масляной основе, на основе воска и пудре.

В зависимости от используемого детектора выбирается один из двух наборов условий, приведенных ниже:

Условия для детектора PDAD

Столбец
Колонка C18 (4,6 мм × 250 мм, 5 мкм) или эквивалент
Подвижная фаза
Раствор фосфорной кислоты
Скорость потока
1,0 мл/мин
Температура колонки
20 ℃
Длина волны детектора
420 нм
Объем впрыска
10 мкл

Условия для детектора FLD

Столбец
Колонка C18 (4,6 мм × 250 мм, 5 мкм) или эквивалент
Подвижная фаза
Раствор фосфорной кислоты
Скорость потока
1,0 мл/мин
Температура колонки
20 ℃
Длина волны возбуждения
425 нм
Длина волны излучения
510 нм
Объем впрыска

Условия постколоночной дериватизации

Скорость потока дериватизационного раствора
0,8 мл/мин
Температура реактора
100 ℃
Хроматограмма дериватизированного

4. Таурин в глазных каплях (постколоночная дериватизация)

Приготовление испытуемого раствора:

Точно отмерьте 3 мл образца и перенесите его в мерную колбу объёмом 50 мл. Разбавьте водой до нужного объёма и тщательно перемешайте. Затем точно отмерьте 5 мл раствора и перенесите его в мерную колбу объёмом 100 мл. Разбавьте водой до нужного объёма и тщательно перемешайте.

Приготовление эталонного раствора:

Точно взвесьте необходимое количество стандартного образца таурина. Растворите и разбавьте водой для приготовления раствора с концентрацией приблизительно 0,15 мг/мл.

Хроматографические условия:

Столбец
колонка C18
Подвижная фаза
Фосфатный буферный раствор (pH 7,0) / ацетонитрил / вода = 70:15:15
Температура колонки
60 ℃
Длина волны детектора
338 нм

Метод постколоночной дериватизации:

Реагент для дериватизации
Приготовьте раствор ортофталевого альдегида (ОПА) следующим образом: растворите 24 г гидроксида натрия и 43,2 г борной кислоты примерно в 2700 мл воды. Доведите pH до 4,0 серной кислотой, добавьте 2 мл 2-меркаптоэтанола и 10 мл 8%-ного этанольного раствора ОПА и разбавьте водой до 3000 мл (готовьте свежий раствор перед использованием).
Реакционная трубка из ПТФЭ
Используйте реакционную пробирку с внутренним диаметром 1 мм и длиной около 40 см.
Температура дериватизации
60 °С
Скорость потока реагента для дериватизации
0,5 мл/мин
Объем впрыска
10 мкл
Хроматограмма таурина в глазных каплях